高壓冷凍技術如何提升海洋微生物分析效果
瀏覽次數(shù):236 發(fā)布日期:2025-7-23
來源:徠卡顯微鏡
甲藻的超微結構分析
環(huán)境樣本(此處以甲藻為例)的超微結構分析至今仍具挑戰(zhàn)性。本研究證明,現(xiàn)場實施高壓冷凍(HPF)技術能顯著保存細胞超微結構,為后續(xù)電子顯微鏡(EM)分析提供條件,從而獲得關于這些海洋生物的新認知。
浮游生物分析材料與方法
甲藻采集采用 5 或 10 微米孔徑網(wǎng)具在法國濱海自由城灣表層水域慢速拖網(wǎng) 10 分鐘。甲板收集后,樣品經(jīng) Retsch 系列篩網(wǎng)過濾獲取 40 微米以下細胞。實驗室處理流程為:
- 通過手動泵抽濾在 1.2 微米混合纖維素酯膜(Merck)上濃縮;
- 重懸至終體積約 4 毫升;
- 1000g 離心 5 分鐘。棄上清后,取約 1.2 微升沉淀物裝入預先涂覆十六烯(Merck)的金銅 A 型載樣臺(Leica;深 200 微米,寬 3 毫米),覆蓋同樣預涂十六烯(Merck)的鋁制 B 型載樣臺(Leica)平面端,使用 Leica EM ICE 進行高壓冷凍。
圖 1:高壓冷凍載樣臺中的濃縮細胞裝載示意圖
圖 2:A型金載樣臺(寬 3 毫米,使用面深度為 200 微米)與B型載樣臺(寬 3 毫米,使用平面?zhèn)龋?nbsp;
冷凍固定樣本經(jīng)過冷凍置換處理(使用
EM AFS2 型號,Leica 公司),程序及溶液如下:在-90°C 的 2%四氧化鋨丙酮溶液中保持 60 小時,以 2°C/小時的速率升溫 15 小時至-60°C,于-60°C 維持 10 小時,再以相同速率升溫 15 小時至-30°C,保持 10 小時后,以最大速率 1 分鐘內(nèi)升溫至 0°C,停留 1 小時,隨后以最大速率 1 分鐘內(nèi)冷卻回-30°C,并用純丙酮在-30°C 下洗滌 5 次。
細胞隨后逐步滲透 EPON 硬樹脂。采用的樹脂(不含促進劑)/丙酮(體積比)梯度系列為:25%濃度起始于-30°C,2 小時內(nèi)升溫至-10°C;50%濃度起始于-10°C,以 5°C/小時速率升溫 2 小時至+10°C;75%濃度起始于+10°C,以 10°C/小時速率升溫 2 小時至+20°C。樣本隨后在不含促進劑的 100%樹脂中分兩次滲透,分別為 12 小時和 48 小時。
隨后用含促進劑的 100%樹脂進行兩次 3 小時和一次過夜的滲透處理,之后在 60°C 下聚合 48 小時。使用超薄切片機(Leica EM UC7)搭配超薄金剛石刀(Diatome)切制 70 納米薄片。薄片經(jīng) 1%醋酸鈾水溶液染色 20 分鐘和檸檬酸鉛染色 3 分鐘后進行后染色。通過 SerialEM 軟件在 JEOL JEM 2100plus 電鏡上以 120 千伏電壓和 8000 倍放大倍數(shù)采集拼圖影像。拼圖處理采用 Imod 和 Fiji 軟件完成。高壓冷凍樣本處理由海德堡 EMBL 電子核心顯微設施(EMCF)完成。
結果

圖 3:按上述方法處理的甲藻顯微照片。比例尺=1 µm。
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