圖 1. DSS用于動物結(jié)腸炎模型的構(gòu)建原理[1]
一、DSS(Dextran sulfate sodium salt)誘導動物結(jié)腸炎的造模原理
DSS誘導結(jié)腸炎的作用過程涉及多個環(huán)節(jié)的協(xié)同作用:
1.
DSS(葡聚糖硫酸鈉)誘導腸道屏障損傷
2.
DSS(葡聚糖硫酸鈉)誘導免疫炎癥激活
3.
DSS(葡聚糖硫酸鈉)誘導腸道菌群紊亂
4.
DSS(葡聚糖硫酸鈉)的類肝素活性
二、DSS(葡聚糖硫酸鈉)用于動物結(jié)腸炎造模的注意事項
1. DSS(葡聚糖硫酸鈉)用于結(jié)腸炎造模的分子量和濃度選擇
DSS(葡聚糖硫酸鈉)的分子量是影響造模效果的重要因素。研究表明,
分子量在36,000-50,000 Da的DSS誘導結(jié)腸炎的效果最為穩(wěn)定;低分子量DSS(如 4,000 Da)可能因腸道吸收過快而降低局部作用效果,高分子量DSS(如 500,000 Da)則由于分子量過高,難以通過黏膜屏障,無法有效誘導結(jié)腸炎
[6]。一般使用40,000 Da的DSS可在小鼠中誘導出較為嚴重的炎癥性腸。↖BD)
[7]。此外,DSS(葡聚糖硫酸鈉)的濃度直接決定炎癥的嚴重程度。急性模型通常采用2%-5% 的濃度,慢性模型多使用1%-3%的濃度
[8];此外,純度不足的DSS可能含有雜質(zhì),干擾實驗結(jié)果,因此需選擇高純度(如≥98%)的試劑
[8],如
DSS(Dextran sulfate sodium salt, AbMole,M9443)。
2. 使用DSS(葡聚糖硫酸鈉)造模時的實驗動物品系選擇
小鼠和大鼠是構(gòu)建結(jié)腸炎模型最常用的實驗動物,其中C57BL/6小鼠對
DSS(Dextran sulfate sodium salt, AbMole,M9443)敏感性較高,造模重復(fù)性好。例如C57BL/6N小鼠通過連續(xù)7周交替飲用含1% 的DSS的滅菌水,可以誘導潰瘍性結(jié)腸炎模型
[9];BALB/c小鼠對DSS的敏感性適中,特別適合構(gòu)建慢性模型
[10]。在以大鼠為模型進行DSS誘導結(jié)腸炎造模時,可以選擇的譜系包括SD(Sprague-Dawley)大鼠和Wistar大鼠,其中Wistar大鼠對DSS誘導的結(jié)腸炎反應(yīng)較為穩(wěn)定,適合用于急性結(jié)腸炎模型的構(gòu)建。例如在一項研究中,Wistar大鼠通過自由飲用5% DSS的滅菌水7天,成功誘導了急性結(jié)腸炎模型
[11]。SD大鼠也同樣適用于構(gòu)建結(jié)腸炎模型,而且由于其體型優(yōu)勢,有助于進行腸道組織取樣和生理指標檢測,適合用于需要長期觀察或多次采樣的實驗。值得注意的是,不管是大鼠還是小鼠均要選擇免疫系統(tǒng)發(fā)育成熟的個體進行實驗。此外,斑馬魚等也可用于DSS誘導的結(jié)腸炎造模,但需調(diào)整DSS(Dextran sulfate sodium salt)濃度和造模周期。在一項研究中,使用0.25%(w/v)的DSS溶液來誘導斑馬魚幼魚的中度腸炎,該濃度被證明能夠成功誘導腸道損傷,同時避免對斑馬魚造成過高的毒性
[12]。
3. 造模指標評估
在
DSS(Dextran sulfate sodium salt, AbMole,M9443)誘導的過程中,可每日記錄動物體重的變化(體重下降率是造模成功與否的重要指標,通常急性結(jié)腸炎模型下降10%-20%);還可以結(jié)合組織病理學檢查:在造模結(jié)束后處死動物,取腸組織進行HE 染色,觀察黏膜損傷、隱窩破壞、炎癥細胞浸潤程度;分子生物學檢測也是常用的手段之一,例如可以檢測結(jié)腸組織中促炎細胞因子(如 TNF-α、IL-6)的 mRNA 或蛋白表達水平,評估炎癥激活程度;腸道通透性檢測則是DSS誘導結(jié)腸炎模型中最常用的評估方法,可通過灌胃熒光標記的葡聚糖如FITC-葡聚糖,檢測血清中熒光強度以評估腸道屏障功能。
三、范例詳解
1. Cell Res. 2025 May 9. (PMID: 40341742.)
復(fù)旦大學、西湖大學的研究團隊在上述文章中探究了紅細胞中殘留的DNA(rbcDNA)在腫瘤早期檢測中的作用及機制。研究發(fā)現(xiàn),在早期實體瘤個體中成熟紅細胞中存在獨特的DNA特征(命名為腫瘤相關(guān)rbcDNA),與健康個體相比,這些特征在特定基因組區(qū)域的測序讀數(shù)存在顯著變化,可實現(xiàn)高精度的早期癌癥檢測(如結(jié)直腸癌檢測靈敏度達94%、特異性達96%,且在肺癌、胃癌等多種癌癥中同樣有效)。此外,在腫瘤小鼠模型中也觀察到了腫瘤相關(guān)的 rbcDNA 特征,其中一些特征在小鼠和人類之間是保守的。研究人員還發(fā)現(xiàn)在腫瘤進展過程中的IL-18信號的慢性上調(diào)會促進BM細胞(骨髓造血干細胞)中的DNA損傷,這有助于腫瘤相關(guān) rbcDNA 特征的形成,但上述過程需要實體瘤的存在。在實驗設(shè)計中為了排除單獨的IL-18上調(diào)不會引起rbcDNA的產(chǎn)生,實驗人員使用了由AbMole提供的
DSS(Dextran sulfate sodium salt, AbMole,M9443)構(gòu)建了小鼠結(jié)腸炎模型(該疾病模型中動物個體會持續(xù)產(chǎn)生高水平的IL-18),rbcDNA 特征分析表明,來自DSS誘導的結(jié)腸炎小鼠的rbcDNA與來自健康小鼠的rbcDNA相比,未見明顯差別,表明單獨的IL-18不足以誘導腫瘤相關(guān)的 rbcDNA 特征形成
[13]。
圖 2. Predictive scores for DSS-treated mice and WT mice based on the linear SVC model[13]
AbMole是ChemBridge中國區(qū)官方指定合作伙伴。
參考文獻及鳴謝
[1] B. Katsandegwaza, W. Horsnell, K. Smith, Inflammatory Bowel Disease: A Review of Pre-Clinical Murine Models of Human Disease, International journal of molecular sciences 23(16) (2022).
[2] L. Y. Pei, Y. S. Ke, H. H. Zhao, et al., Role of colonic microbiota in the pathogenesis of ulcerative colitis, BMC gastroenterology 19(1) (2019) 10.
[3] L. Hui, M. K. Huang, Q. K. Dai, et al., Amlexanox targeted inhibition of TBK1 regulates immune cell function to exacerbate DSS-induced inflammatory bowel disease, Clinical and experimental immunology 219(1) (2025).
[4] C. Lee, S. Kim, B. Kim, et al., Disturbance of lipid metabolism in germ-free mice transplanted with gut microbiota of DSS-induced colitis mice, PloS one 18(2) (2023) e0280850.
[5] Benoit, Chassaing, D Jesse, et al., Dextran sulfate sodium (DSS)-induced colitis in mice, (2014).
[6] M Pere, A %J Journal of biomedicine Cerar, biotechnology, Dextran Sodium Sulphate Colitis Mouse Model: Traps and Tricks, 2012(V) (2012) 718617-718629.
[7] Shuji Kitajima, Shigenobu Takuma, Masatoshi %J Exp Anim Morimoto, Histological Analysis of Murine Colitis Induced by Dextran Sulfate Sodium of Different Molecular Weights, 49(1) (2000) 9-15.
[8] S. Kitajima, S. Takuma, M. Morimoto, Histological analysis of murine colitis induced by dextran sulfate sodium of different molecular weights, Experimental animals 49(1) (2000) 9-15.
[9] Michael D Shultz, J Ulises Reveles, Shiv N Khanna, et al., Reactive Nature of Dopamine as a Surface Functionalization Agent in Iron Oxide Nanoparticles, 129(9) (2007) 2482-2487.
[10] Sina Riemschneider, Maximilian Hoffmann, Ulla Slanina, et al., Indol-3-Carbinol and Quercetin Ameliorate Chronic DSS-Induced Colitis in C57BL/6 Mice by AhR-Mediated Anti-Inflammatory Mechanisms, 18(5) (2021) 2262.
[11] A. G. Alkushi, S. T. Elazab, A. Abdelfattah-Hassan, et al., Multi-Strain-Probiotic-Loaded Nanoparticles Reduced Colon Inflammation and Orchestrated the Expressions of Tight Junction, NLRP3 Inflammasome and Caspase-1 Genes in DSS-Induced Colitis Model, Pharmaceutics 14(6) (2022).
[12] R. Yi, B. Yang, H. Zhu, et al., Quorum-Sensing Signal DSF Inhibits the Proliferation of Intestinal Pathogenic Bacteria and Alleviates Inflammatory Response to Suppress DSS-Induced Colitis in Zebrafish, Nutrients 16(11) (2024).
[13] Haobo Sun, Xingyun Yao, Yurong Jiao, et al., DNA remnants in red blood cells enable early detection of cancer, Cell research (2025).